使用RSEM进行转录组测序的差异表达分析
仍然是两年前的笔记
1. prepare-reference
如果用RSEM对比对后的bam进行转录本定量,则在比对过程中要确保比对用到的索引是由rsem-prepare-reference产生的。
~/software/rsem/rsem-prepare-reference \
--transcript-to-gene-map ~/project/RNA-seq/ref_cds/gene_transcript.txt \ #作用是在后面的定量结果文件中,添加gene名称, 转录本名称两列,该文件每一行都是gene_id\ttranscript_id的形式,eg: cluster_11236 cluster_11236.1
--bowtie2 \ #RSEM可调用bowtie, bowtie2, STAR三种比对工具;这里选用bowtie2
~/project/RNA-seq/ref_cds/HC_cds_and_8sample_clustercds.fa \
~/project/RNA-seq/ref_cds/cds.byrsem
可以看到,单纯用bowtie2建的索引和rsem调用bowtie2建的索引是不一样的。
2. calculate-expression
用法分为两类,分别是从fa/fq得到表达矩阵,和从sam/bam得到表达矩阵(仍然要求是比对到rsem-prepare-reference生成的索引)。以单端的fq数据为例。
rsem-calculate-expression [options] upstream_read_file(s) reference_name sample_name
rsem-calculate-expression [options] --paired-end upstream_read_file(s) downstream_read_file(s) reference_name sample_name
rsem-calculate-expression [options] --sam/--bam [--paired-end] input reference_name sample_name
cat ~/project/RNA-seq/dir.txt | while read id
do
~/software/rsem/rsem-calculate-expression -p 8 --bowtie2 \
~/project/data/RNA-seq/${id}.fastq.gz \
~/project/RNA-seq/ref_cds/cds.byrsem \
--samtools-sort-mem 2G --fragment-length-mean 50 \ # 单端数据建议使用--fragment-length-mean和--fragment-length-sd
~/project/RNA-seq/map/${id}.rsem
done
完成之后得到这些文件,其中,rsem.genes.results和rsem.isoforms.results分别表示gene水平和转录本水平的定量结果。每一列含义:
less rsem.genes.results|head -n 1
gene_id transcript_id(s) length effective_length expected_count TPM FPKM
less rsem.isoforms.results|head -n 1
transcript_id gene_id length effective_length expected_count TPM FPKM IsoPct
后面用EBseq检验差异基因/转录本时,会使用到这两个文件。
3. Differential Expression Analysis using EBSeq
下面以gene水平差异分析为例。
3.1 generate-data-matrix
这一步提取上一步得到的每个样本定量结果文件中的expected_count列,组成数据矩阵。
~/software/rsem/rsem-generate-data-matrix \
SRR1.rsem.genes.results SRR2.rsem.genes.results \
SRR3.rsem.genes.results SRR4.rsem.genes.results \
SRR5.rsem.genes.results SRR6.rsem.genes.results \
SRR7.rsem.genes.results SRR8.rsem.genes.results \
> ~/project/RNA-seq/count/GeneMat.txt
3.2 run-ebseq
调用EBseq进行检验
~/software/rsem/rsem-run-ebseq \
GeneMat.txt 2,2,2,2 GeneMat.results #2,2,2,2表示4个condition, 每个condition有两个重复;顺序要和3.1中输入文件表示的condition的顺序一致
#会得到三个文件
GeneMat.results.condmeans GeneMat.results GeneMat.results.pattern
#GeneMat.results.pattern
"C1" "C2" "C3" "C4"
"Pattern1" 1 1 1 1
"Pattern2" 1 1 1 2
"Pattern3" 1 1 2 1
"Pattern4" 1 1 2 2
"Pattern5" 1 2 1 1
"Pattern6" 1 2 1 2
"Pattern7" 1 2 2 1
"Pattern8" 1 2 2 2
"Pattern9" 1 1 2 3
"Pattern10" 1 2 1 3
"Pattern11" 1 2 2 3
"Pattern12" 1 2 3 1
"Pattern13" 1 2 3 2
"Pattern14" 1 2 3 3
"Pattern15" 1 2 3 4
#以Pattern14为例,1 2 3 3表示某基因表达:C1与C2不同,C3与C4相同
#四种condition如果有基因表达存在差异,就这些情况了
#GeneMat.results
#第一列是各个基因名称,接着15列是该基因符合该种Parttern的概率
#"MAP"为该基因最可能的模式;"PPDE":posterior probability of being differentially expressed,越大越好
"Pattern1" "Pattern2" "Pattern3" "Pattern4" "Pattern5" "Pattern6" "Pattern7" "Pattern8" "Pattern9" "Pattern10" "Pattern11" "Pattern12" "Pattern13" "Pattern14" "Pattern15" "MAP" "PPDE"
#GeneMat.results.condmeans
#为每个样本合并重复之后的定量结果,如下图,这个结果可以用来控制fold change
3.3 control_fdr
控制FDR(错误发现率)来挑选差异基因
~/software/rsem/rsem-control-fdr \
GeneMat.results 0.05 GeneMat.de.txt
将GeneMat.results文件中,PPDE大于0.95的记录提取出来
因水平有限,有错误的地方,欢迎批评指正!
使用RSEM进行转录组测序的差异表达分析的更多相关文章
- 转录组差异表达分析工具Ballgown
Ballgown是分析转录组差异表达的R包. 软件安装: 运行R, source(“http://bioconductor.org/biocLite.R”) biocLite(“ballgown”) ...
- 单细胞转录组测序数据的可变剪接(alternative splicing)分析方法总结
可变剪接(alternative splicing),在真核生物中是一种非常基本的生物学事件.即基因转录后,先产生初始RNA或称作RNA前体,然后再通过可变剪接方式,选择性的把不同的外显子进行重连,从 ...
- 差异表达分析之FDR
差异表达分析之FDR 随着测序成本的不断降低,转录组测序分析已逐渐成为一种很常用的分析手段.但对于转录组分析当中的一些概念,很多人还不是很清楚.今天,小编就来谈谈在转录组分析中,经常会遇到的一个概念F ...
- Differential expression analysis for paired RNA-seq data 成对RNA-seq数据的差异表达分析
Differential expression analysis for paired RNA-seq data 抽象背景:RNA-Seq技术通过产生序列读数并在不同生物条件下计数其频率来测量转录本丰 ...
- RNA-Seq differential expression analysis: An extended review and a software tool RNA-Seq差异表达分析: 扩展评论和软件工具
RNA-Seq differential expression analysis: An extended review and a software tool RNA-Seq差异表达分析: 扩展 ...
- 表达谱(DGE)测序与转录组测序的差别
DGE-seq和普通的transcriptomic profiling相比较有什么不同,有什么特点? DGE就是用酶将mRNA切断,只使用靠近poly A的一小段RNA去测序. #1 由于不是测定mR ...
- 单细胞转录组测序技术(scRNA-seq)及细胞分离技术分类汇总
单细胞测序流程(http://learn.gencore.bio.nyu.edu) 在过去的十多年里,高通量测序技术被广泛应用于生物和医学的各种领域,极大促进了相关的研究和应用.其中转录组测序(RNA ...
- 转录组测序(RNA-seq)技术
转录组是某个物种或者特定细胞类型产生的所有转录本的集合.转录组研究能够从整体水 平研究基因功能以及基因结构,揭示特定生物学过程以及疾病发生过程中的分子机理,已广泛应 用于基础研究.临床诊断和药 ...
- 转录组分析综述A survey of best practices for RNA-seq data analysis
转录组分析综述 转录组 文献解读 Trinity cufflinks 转录组研究综述文章解读 今天介绍下小编最近阅读的关于RNA-seq分析的文章,文章发在Genome Biology 上的A sur ...
随机推荐
- EasyUI动态显示后台数据库中的数据
最近在完成一个项目,采用SSM框架搭建完成,前端使用EasyUI搭建页面: 其中涉及到一个查询显示功能:查询数据库中的数据,动态显示在页面之中,刚开始这部分十分有疑问,所以虚心向同学学习,现总结至博客 ...
- Maven 私服(Nexus)
@[toc](Maven 私服(Nexus)) 1.Nexus 简介 Nexus是Maven仓库管理器,也可以叫Maven的私服.Nexus是一个强大的Maven仓库管理器,它极大地简化了自己内部仓库 ...
- java架构《并发线程基础二》
1.关键字 volatile 使用场景: 针对与多线程公用的数据 用volatile关键字修饰 但其不保证原子性(同步).volatile关键字不具备synchronized ...
- hbase 集群(完全分布式)方式安装
一,环境 1, 主节点一台: ubuntu desktop 16.04 zhoujun 172.16.12.1 从节点(slave)两台:ubuntu server 16.04 hadoo ...
- linux 用户、用户组及相关命令(useradd 、passwd、userdel 、groupadd 、groupdel、usermod 、gpasswd 、 id、su)
linux是一个多用户系统,用于权限管理(权限最小化); 相关命令: 7 8 9 10 11 12 13 14 15 useradd passwd userdel groupadd groupdel ...
- 使用Python调用SMTP服务自动发送Email
需求背景 假设我们想设计一个定时任务,比如每天定时的用python来测试服务是否在正常运行,但是又不希望每天登录到系统后台去查看服务状态.这里我们就可以采取python的smtp模块进行任务结果广播, ...
- spark sql优化
1.内存优化 1.1.RDD RDD默认cache仅使用内存 可以看到使用默认cache时,四个分区只在内存中缓存了3个分区,4.4G的数据 使用kryo序列化+MEMORY_ONLY_SER 可以看 ...
- Eclipse中配置Junit
在要使用Junit的project名上,点击properties-->Java Build Path-->Libraries,点击Add Library 选择Junit 选择Junit 4 ...
- 2019牛客暑期多校训练营(第八场)A.All-one Matrices(dp)
题意:又是最大01矩阵的模型了 这次要找的是极大0/1矩阵的个数 思路:我们像处理最大01矩阵那样处理一下边界 由于我们上左右已经无法再继续扩展 我们只需要用前缀和记录一下是否可以向下扩展(即判断当前 ...
- Codeforces Round #657 (Div. 2) B. Dubious Cyrpto(数论)
题目链接:https://codeforces.com/contest/1379/problem/B 题意 给出三个正整数 $l,r,m$,判断在区间 $[l,r]$ 内是否有 $a,b,c$ 满足存 ...